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このコンテンツはDoç. Dr. Mehmet ÇOLAKが科学的資料に基づいて作成しました。
乳牛

乳房炎と体細胞数(SCC):診断、治療、およびコントロールプログラム

Doç. Dr. Mehmet ÇOLAK 18 2月 2026 97 回表示

病原体分類、SCC解釈、診断、培養に基づく治療、乾乳期治療、搾乳衛生、群モニタリングを整理した実践ガイドです。


乳房炎は、酪農において最も大きな経済損失を生む疾患です。臨床型と潜在型の両方がほぼすべての牛群に影響します。潜在性乳房炎は主として体細胞数(SCC)の上昇として現れ、乳質、乳量、公衆衛生に直接影響します。本稿では、乳房炎の病因、SCCの解釈、診断法、治療プロトコル、乾乳期治療、および実践的な10項目の乳房炎コントロール計画を最新文献に基づいて整理します。

経済的影響

乳房炎は世界の乳業に年間197億〜320億ドルの損失をもたらすと推定されています。臨床性乳房炎1例あたりのコストは250〜450ドル、潜在性乳房炎では1頭あたり年間100〜200ドルの損失が生じ得ます。SCCが100,000細胞/mL増加するごとに、乳量は0.4〜0.6 kg/日低下する可能性があります。トルコではバルク乳SCCの平均が400,000〜600,000細胞/mLとされ、EU基準の400,000を上回ることが一般的です(Halasa et al., 2007; Seegers et al., 2003)。

1. 乳房炎の病因と分類

1.1 伝染性病原体

これらの病原体は主として搾乳時に牛から牛へ伝播します。慢性かつ潜在性の感染を起こしやすく、SCCを持続的に上昇させます。

病原体 伝播経路 臨床的特徴 SCCへの影響 治療反応
Staphylococcus aureus 搾乳機器、手指 慢性、潜在性、微小膿瘍形成 非常に高い(>500,000) 不良(治癒率20-30%)
Streptococcus agalactiae 搾乳機器 潜在性、バルク乳SCCを上昇させる 高い 良好(治癒率90%以上)
Mycoplasma bovis 搾乳、呼吸器由来の伝播 複数分房、治療抵抗性 変動的 有効な治療なし
Corynebacterium bovis 搾乳機器 軽度の潜在性感染 中等度 良好

1.2 環境性病原体

これらの病原体は敷料、糞便、土壌、水などの環境から感染します。一般に急性の臨床性乳房炎と関連します。

病原体 由来 臨床的特徴 高リスク時期
E. coli 糞便、敷料、水 急性/甚急性、トキシミア、発熱、ショック 乾乳後期、分娩直後
Klebsiella spp. おがくず敷料、土壌 急性、重症、高死亡率 全期間
Streptococcus uberis 土壌、敷料、放牧地 潜在性または臨床型、乾乳期に多い 乾乳期、初期泌乳
Streptococcus dysgalactiae 環境 + 伝染性 急性臨床型、治療反応は良好 全期間
Pseudomonas aeruginosa 汚染水 慢性、治療抵抗性 給水系の汚染時

2. 体細胞数(SCC)の解釈

SCCは乳中の白血球、主に好中球の数を示し、乳房の健康状態を最もよく反映する指標です。健康な分房ではSCCは100,000細胞/mL未満であるべきです(Schukken et al., 2003)。

SCC(細胞/mL) 線形スコア(LS) 状態 推定乳量損失
<100,000 0-2 健康な乳房 損失なし
100,000-200,000 3 軽度刺激または回復段階 0-3%
200,000-400,000 4-5 潜在性乳房炎の可能性が高い 3-6%
400,000-800,000 5-6 潜在性乳房炎(感染確定) 6-10%
>800,000 7+ 重度感染 10-25%
バルク乳SCCの目標値
  • 優秀: 150,000細胞/mL未満
  • 良好: 150,000-250,000細胞/mL
  • 許容範囲: 250,000-400,000細胞/mL
  • 問題あり: 400,000細胞/mL超(EU法定基準)
  • トルコの法的上限: 500,000細胞/mL(生乳)

3. 診断法

方法 実施法 感度 用途
CMT(California Mastitis Test) 搾乳前に各分房の前搾り乳とCMT試薬を混合 70-85% 牛舎でのスクリーニング、安価、迅速
SCC(個体牛) DHIによる月次乳分析 85-95% 潜在性乳房炎の検出、群モニタリング
細菌培養 無菌的に採取した乳サンプルを検査室へ提出 90-95% 病原体の同定と治療選択
農場内培養(Petrifilm, REGA) 農場で簡易培地を使用 75-85% Gram陽性/陰性の判別と迅速な治療判断
PCR 乳サンプルからDNAを検出 95%+ Mycoplasma検出、S. aureusタイピング
電気伝導度 搾乳システムのセンサー 50-70% 自動早期警報、特異度は低い

4. 治療プロトコル

4.1 臨床性乳房炎の治療

治療判断:培養に基づくアプローチ

現代の乳房炎治療では、無条件に治療を始めるよりも「まず培養し、次に標的治療する」方針が推奨されます。農場内培養でGram陽性・陰性を区別すると、不必要な抗菌薬使用を40-50%減らせます。特にE. coliなどのGram陰性症例の多くは自然治癒するため、支持療法(NSAID + 頻回搾乳)のみで十分な場合があります(Lago et al., 2011)。

病原体群 治療 期間 治癒率
Gram陽性(Strep, Staph) 乳房内抗菌薬(セファペラゾン、アモキシシリン・クラブラン酸など) 3-5日、S. aureusでは5-8日の延長治療 Strep: 80-90%、S. aureus: 20-30%
Gram陰性(E. coli) NSAID(フルニキシン)+ 頻回搾乳。全身抗菌薬はトキシミア時のみ 2-3日の支持療法 70-85%(自然治癒が多い)
培養陰性 抗菌薬なし、またはNSAIDのみ 80-90%の自然回復
Mycoplasma 有効な治療なし — 隔離または淘汰 0%

4.2 甚急性・毒性乳房炎の救急治療

救急治療:毒性乳房炎(E. coli / Klebsiella)
  • 静脈輸液: 等張NaClまたは乳酸リンゲルを10-20 L速やかに投与
  • NSAID: フルニキシンメグルミン 2.2 mg/kg IV でエンドトキシミアを抑制
  • 頻回搾乳: 罹患分房を4-6時間ごとに排乳
  • 全身抗菌薬: 必要に応じてセフチオフル 2.2 mg/kg IM またはオキシテトラサイクリン
  • 乳房内抗菌薬: セファペラゾンなどの広域製剤
  • カルシウム補正: 低カルシウム血症を確認し、必要ならカルシウムボログルコン酸を投与
  • 予後: 早期治療なら生存率70-80%、遅れると30-50%

5. 乾乳期治療(Dry Cow Therapy)

乾乳期治療は、乾乳時に乳房内抗菌薬と内用ティートシーラントを併用し、既存の潜在性感染を治療しつつ、乾乳期中の新規感染を防ぐ方法です(Bradley et al., 2015)。

ブランケット乾乳期治療

すべての牛に乾乳時、抗菌薬とシーラントを適用します。

  • 適応: バルク乳SCC >250,000、S. aureus または S. agalactiae の有病率が高い群
  • 抗菌薬: クロキサシリン、セファロニウムなどの長時間作用型乳房内製剤
  • シーラント: ビスマスサブニトレート製剤(例:Orbeseal®)
  • 利点: シンプルで感染分房を取りこぼしにくい
  • 欠点: 低リスク牛にも抗菌薬を使用する
選択的乾乳期治療

感染牛のみに抗菌薬を使用し、全頭にシーラントを適用します。

  • 適応: バルク乳SCC <250,000、S. aureus の有病率が低い群
  • 基準: 直近3回のDHIのいずれかでSCC >200,000、または臨床性乳房炎歴あり → 抗菌薬 + シーラント
  • 低SCC牛: シーラントのみ
  • 利点: 抗菌薬使用を40-60%削減
  • 欠点: 慎重な選定が必要

6. 乳房炎コントロールプログラム:10項目計画

NMC 10項目乳房炎コントロール計画
  1. 目標を設定する: バルク乳SCC <200,000、臨床性乳房炎発生率 <月2%
  2. 清潔で乾燥した快適な牛舎: 敷料管理と寝床衛生
  3. 正しい搾乳手順: 前搾り、乳頭準備、適時装着、過搾乳回避
  4. 搾乳設備の保守: 年2回の点検、真空圧42-44 kPa、パルセーション確認
  5. 搾乳後ディッピング: 0.5-1%ヨウ素または0.5%クロルヘキシジン
  6. 臨床性乳房炎の治療: 培養に基づき、記録し、プロトコル化する
  7. 乾乳期治療: ブランケットまたは選択的 + シーラント
  8. 慢性感染牛の除外: 慢性 S. aureus や臨床発作3回以上の牛
  9. バイオセキュリティ: 導入牛を検査し、隔離する
  10. 監視と記録: 月次DHI、バルク乳SCC、臨床症例記録

7. 搾乳衛生プロトコル

手順 実施内容 時間 目的
1. 前搾り 各分房から2-3条をストリップカップへ出す 10-15秒/頭 臨床性乳房炎の確認とオキシトシン反射の誘導
2. プレディップ 乳頭を消毒液に浸す 接触時間30秒 環境性病原体を減らす
3. 乾拭き 個別ペーパータオルで乳頭を乾燥させる 10-15秒/頭 消毒液残渣と汚れを除去
4. ミルカー装着 前搾り後60-90秒で装着 オキシトシン分泌ピークに合わせる
5. 搾乳監視 過搾乳を避け、自動離脱装置を使う 4-7分/頭 乳頭端損傷を防ぐ
6. ポストディップ 搾乳直後に乳頭を消毒液へ浸す 直後 伝染性病原体を減らし、乳頭状態を保護

8. 群レベルのモニタリング

項目 目標 警戒閾値 測定方法
バルク乳SCC <200,000細胞/mL >400,000 集乳ごと、または週次
臨床性乳房炎発生率 <月2%(cow-month basis) >月4% 月次記録
乾乳期の新規感染率 <15% >25% 乾乳時と分娩時のSCC比較
慢性感染牛の割合(SCC >400,000 が3か月超) <5% >10% DHI記録
臨床性乳房炎の治癒率 >75% <60% 治療後SCCフォロー
乳房炎による淘汰率 <年5% >年8% 年次記録

9. 参考文献

  • Bradley, A. J., et al. (2015). An investigation of the efficacy of a polyvalent mastitis vaccine using different vaccination regimens under field conditions in the United Kingdom. Journal of Dairy Science, 98(3), 1706-1720.
  • Halasa, T., et al. (2007). Economic effects of bovine mastitis and mastitis management: A review. Veterinary Quarterly, 29(1), 18-31.
  • Lago, A., et al. (2011). The selective treatment of clinical mastitis based on on-farm culture results: I. Effects on antibiotic use, milk withholding time, and short-term clinical and bacteriological outcomes. Journal of Dairy Science, 94(9), 4441-4456.
  • NMC (National Mastitis Council). (2017). Current Concepts of Bovine Mastitis (5th ed.). Madison, WI: NMC.
  • Schukken, Y. H., et al. (2003). Monitoring udder health and milk quality using somatic cell counts. Veterinary Research, 34(5), 579-596.
  • Seegers, H., et al. (2003). Production effects related to mastitis and mastitis economics in dairy cattle herds. Veterinary Research, 34(5), 475-491.
タグ: Mastitis SHS Somatik Hücre CMT 乾乳期 Teat Dipping S. aureus E. coli NMC

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